Distribución y abundancia del fitoplancton y zooplancton en la laguna “La María”, Quevedo, Los Ríos
DOI:
https://doi.org/10.47230/agrosilvicultura.medioambiente.v3.n2.2025.35-53Keywords:
Ecosistemas lénticos, Biodiversidad acuática, Plancton, Microalgas, ZooplanctonAbstract
El fitoplancton y zooplancton son organismos fotosintéticos responsables de mantener el equilibrio ecológico, la productividad primaria y el reciclaje de nutrientes en los ecosistemas acuáticos, en este estudio se identificó la abundancia y distribución de los organismos fitoplanctónicos y zooplanctónicos en la Laguna “La María”. Durante los meses de enero a marzo 2024, se recolectaron muestras cada 15 días mediante arrastres superficiales con una red de pesca de 45 micras, se establecieron 8 estaciones, se tomó una muestra por estación (dos repeticiones por estación), se tomaron parámetros de temperatura, O2, disco Secchi. No se encontró diferencias significativas en variables físicas del agua. Se registraron un total de 53 especies de fitoplancton, agrupadas en 32 familias y 37 géneros, pertenecientes a los taxones Bacillariophyta, Euglenophyta, Charophyta, Chlorophyta y Cyanobacteria. Los grupos con mayor riqueza específica fueron Bacillariophyta, con 22 especies (43%), y Charophyta, con 12 especies (23%), seguidos por Euglenophyta (8 especies, 15%), Chlorophyta (6 especies, 11%) y Cyanobacteria (5 especies, 9%). Bacillariophyta y Charophyta destacaron como los grupos con mayor diversidad. En cuanto a abundancia, las especies más representativas fueron Navicula sp. (15,6%) y Trachelomonas sp. (14,6%). La estación 8 presentó la mayor concentración de fitoplancton y zooplancton, con un total de 6 especies, siendo Arcella sp. la más dominante (36,8%). Thermocyclops sp. (Copépoda) fue detectada en cuatro estaciones (14,5%) y Moina sp. en seis estaciones (11,8%). También se observó a las Amebas testeadas como Arcella intermedia (5,3%) en tres estaciones. Se observó condiciones óptimas de Temperatura (26,77°C y 28,99°C), OD (5,87 y 6,34 mg/L.) y transparencia del agua (0,25 y 0,35 m) para el desarrollo de estas especies. Es necesario llevar el monitoreo continuo de estas comunidades para el manejo adecuado de los recursos acuáticos en la región de Quevedo, promoviendo la conservación y sostenibilidad de este ecosistema.
Downloads
References
Allan, JD, y Castillo, MM (2007). Ecología fluvial: estructura y función de las aguas corrientes. Dordrecht: Springer, Países Bajos.
Al-Yamani, F. Y., Skryabin, V., Gubanova, A., Khvorov, S., & Prusova, I. (2011). Marine zooplankton practical guide. Kuwait Institute for Scientific Research, Kuwait, 399.
Bai, S., Gao, J., Sun, D. y Tian, M. (2020). Monitoreo de la transparencia hídrica en aguas lacustres someras y eutróficas basado en observaciones de GOCI. Teledetección , 12 (1), 163. https://doi.org/10.3390/rs12010163
Behind, F. (2017). Los rotíferos y las diatomeas Don ’ t Fall Behind favorecen los viveros de biofloc de. 1–6.
Bellinger, E. G., & Sigee, D. C. (2010). Freshwater algae: Identification and use as bioindicators. Wiley-Blackwell.
Briceño, H., Buonocore, R., Sangronis, C., García-Pinto, L., Rojas, J., Chirinos, J., González, A., & López, C. (2009). Composición y abundancia del plancton de la Costa Noreste de la Bahía El Tablazo, Sistema de Maracaibo, Venezuela. Boletín del Centro de Investigaciones Biológicas, 43(4), 463–485.
Camaño, M. C., Vargas, M. D., Rodríguez, J. G., & Uribe, E. A. (2021). Evaluación de productividad en estanques para cultivo de alimento vivo. Inventio, 17(43), 1–8.
Caspers, H. (1965). Newell, GE & RC: Marine Plankton, a practical guide. With 51 pl. London: Hutchinson Educational Ltd. 1963. 207 pp. 21s. Wiley Online Library.
Carlson, R. E. (1977). A trophic state index for lakes. Limnology and Oceanography, 22(2), 361–369. https://doi.org/10.4319/lo.1977.22.2.0361
Cevallos-Rivera, M., Zárate-Baca, S., Ortega-Andrade, S., Chimbo-Yépez, G., Ramírez-Itás, D., Novoa-Rivera, J., & Sandoval-Guano, C. (2025). Exploring freshwater microalgae diversity in Yahuarcocha and San Pablo highland lakes for biotechnological applications in the Ecuadorian Andean. Heliyon, 11(13). https://doi.org/10.1016/j.heliyon.2025.e43064
Colmenares, M. E. M. (2023). El papel del zooplancton como indicador de calidad de agua aplicado a los embalses de la Cuenca del Ebro, España. Universitat de València.
Conley, D. J., & Malone, T. C. (1992). Bay : implications for the production and fate of. Marine Ecology Progress Series, 81(2296), 121–128.
Diaz Valle, K. A. (2014). Variación de la estructura comunitaria del fitoplancton y zooplancton de un embalse polimíctico temperado de Chile Central durante un periodo anual con decrecimiento sostenido del volumen de agua: un estudio de campo.
Dodds, W. K., Bouska, W. W., Eitzmann, J. L., Pilger, T. J., Pitts, K. L., Riley, A. J., Schloesser, J. T., & Thornbrugh, D. J. (2009). Eutrophication of US freshwaters: analysis of potential economic damages. ACS Publications.
Escobar, M. J., Terneus, E., & Yánez, P. (2013). El plancton como bioindicador de la calidad del agua en zonas agrícolas andinas, análisis de caso. Qualitas, 5(1), 17–37.
Falkowski, P. G., Laws, E. A., Barber, R. T., & Murray, J. W. (2003). Phytoplankton and their role in primary, new, and export production. Ocean biogeochemistry: The role of the ocean carbon cycle in global change, 99–121.
FE, R., & Mann, R. C. & D. (1990). F.E. Round, R.M. Crawford & D.G. Mann The diatoms: biology and morphology of the genera, ix, 747p. Cambridge University Press, 1990. Price £125.00. Journal of the Marine Biological Association of the United Kingdom, 70(4), 924. https://doi.org/DOI: 10.1017/S0025315400059245
Field, C. B., Behrenfeld, M. J., Randerson, J. T., & Falkowski, P. (1998). Primary production of the biosphere: integrating terrestrial and oceanic components. science, 281(5374), 237–240.
Phillips, G., Willby, N., & Moss, B. (2016). Submerged macrophyte decline in shallow lakes: What have we learnt in the last forty years? Aquatic Botany, 135, 37–45. https://doi.org/10.1016/j.aquabot.2016.04.004
Guevara, M. J. P. (2006). Alimento vivo y su importancia en acuicultura. Revista Electrónica de Ingeniería en Producción Acuicola, 2(2).
Gulati, R. D., & Van Donk, E. (2002). Lakes in the Netherlands, their origin, eutrophication and restoration: state-of-the-art review. Ecological restoration of aquatic and semi-aquatic ecosystems in the Netherlands (NW Europe), 73–106.
Holdridge, L. R., & Tosi Jr, J. A. (1967). Tropical Science Center: San jose, Costa Rica. Life Zone Ecology; Tropical Science Center: San Jose, Costa Rica.
Krause, J. W., & Lomas, M. W. (2020). Understanding Diatoms’ Past and Future Biogeochemical Role in High-Latitude Seas. Geophysical Research Letters, 47(1). https://doi.org/10.1029/2019GL085602
Lampert, W., & Sommer, U. (2007). Limnoecology: the ecology of lakes and streams. Oxford University Press, USA.
Lehman, J. T. (1988). Ecological principles affecting community structure and secondary production by zooplankton in marine and freshwater environments 1. Limnology and Oceanography, 33(4part2), 931-945.
Linares Cuesta, J. E., Olofsson, L., & Sánchez Castillo, P. (2007). Comunidades de diatomeas epipélicas en las lagunas de alta montaña de Sierra Nevada (Granada, España). limnetica, 26(1), 99–113.
Linton, EW, Karnkowska-Ishikawa, A., Im Kim, J., Shin, W., Bennett, MS, Kwiatowski, J., ... y Triemer, RE (2010). Reconstrucción de las relaciones evolutivas euglenoides mediante tres genes: SSU y LSU nucleares, y secuencias de ADNr de SSU cloroplástico, y la descripción de Euglenaria gen. nov. (Euglenophyta). Protist , 161 (4), 603-619.
López, C., Bonecker, C., Perbiche-Neves, G., & Elías-Gutiérrez, M. (2025). The Lack of Researchers: A Critical Threat to Studies on Freshwater Zooplankton in Latin America. Diversity, 17(6), 381. https://doi.org/10.3390/d17060381
Maila, M., Pérez, E., & Figueroa, H. (2017). Estudio preliminar de fitoplancton en la laguna de Colta, Chimborazo-Ecuador. CINCHONIA, 15(1), 102–126.
Molina-Santos, M., Terneus-Jácome, E., Yánez-Moretta, P., & Cueva-Sánchez, M. (2018). Resiliencia de la comunidad fitoplanctónica en la laguna andina de Papallacta y sus afluentes, ocho años después de un derrame petrolero. LA GRANJA. Revista de Ciencias de la Vida, 28(2), 67–83.
O’Sullivan, P., & Reynolds, C. (2004). Limnology and Limnetic ecology. (No Title).
Padisák, J., Crossetti, LO y Naselli-Flores, L. Uso y abuso en la aplicación de la clasificación funcional del fitoplancton: una revisión crítica con actualizaciones. Hydrobiologia 621 , 1–19 (2009). https://doi.org/10.1007/s10750-008-9645-0
Paerl, H. W., & Huisman, J. (2009). Climate change: a catalyst for global expansion of harmful cyanobacterial blooms. Environmental microbiology reports, 1(1), 27–37.
Paerl, H. W., & Otten, T. G. (2013). Harmful cyanobacterial blooms: Causes, consequences, and controls. Microbial Ecology, 65(4), 995–1010. https://doi.org/10.1007/s00248-012-0159-y
Pančić, M., Torres, R. R., Almeda, R., & Kiørboe, T. (2019). Silicified cell walls as a defensive trait in diatoms. Proceedings of the Royal Society B, 286(1901), 20190184.
Pinilla, G. A. P. A. (1998). Indicadores biológicos en ecosistemas acuáticos continentales de Colombia: compilación bibliográfica. U. Jorge Tadeo Lozano.
Pla, L. (2006). Biodiversidad: Inferencia basada en el índice de Shannon y la riqueza. Interciencia, 31(8), 583–590.
Prado, M., Bucheli, R., & Calderón, G. (2010). Composición, distribución y abundancia del plancton en sistemas fluviales de la provincia de Los Ríos-Ecuador. Boletín Científico Y Técnico, 20(6), 1–52.
Reynolds, C. S. (2006). The ecology of phytoplankton. Cambridge University Press.
Rose, M., & Tregouboff, G. (1957). Manuel de planctonoligie Mediterraneenne. Tome I, II. Centre National de la Recherche Scientifique, Paris, 587.
Schwoerbel, J. (1975). Métodos de hidrobiología:(Biología del agua dulce) (Número QH96. S38 1975.).
Segura-García, V., Cantoral-Uriza, E. A., Israde, I., & Maidana, N. (2012). Diatomeas epilíticas como indicadores de la calidad del agua en la cuenca alta del río Lerma, México. Hidrobiológica, 22(1), 16–27.
Smith, V. H., Tilman, G. D., & Nekola, J. C. (1999). Eutrophication: impacts of excess nutrient inputs on freshwater, marine, and terrestrial ecosystems. Environmental pollution, 100(1–3), 179–196.
Stadtländer, C. T.-H. (2013). EG Bellinger, DC Sigee (2010). Freshwater Algae: Identification and Use as Bioindicators: Wiley-Blackwell, Chichester, West Sussex, UK. 284 pp., ISBN: 978-0-470-05814-5. Price: US $149.95 (Hardback). Springer.
Stevenson, R. J. (1996). An introduction to algal ecology in freshwater benthic habitats. Algal ecology-freshwater benthic ecosystems, 3–30.
Vanelslander, B., Paul, C., Grueneberg, J., Prince, EK, Gillard, J., Sabbe, K., ... y Vyverman, W. (2012). Explosiones diarias de bromuro de cianógeno biogénico (BrCN) controlan la formación de biopelículas alrededor de una diatomea bentónica marina. Actas de la Academia Nacional de Ciencias , 109 (7), 2412-2417.
Vouilloud, A. A. B., Sala, S. E., & Sabbatini, M. R. (2005). Diatomeas perifíticas de la cuenca del Río Sauce Grande (Buenos Aires, Argentina).
Wetzel, RG (2001). Limnología: ecosistemas lacustres y fluviales . Gulf Professional Publishing.
Wetzel, R. G., & Likens, G. E. (1991). Limnological Analyses 2nd edSpringer-Verlag. New York. pp.
Wolfe, B. B., Hall, R. I., Edwards, T. W. D., Vardy, S. R., Falcone, M. D., Sjunneskog, C., Sylvestre, F., McGowan, S., Leavitt, P. R. & van Driel, P. (2008). Hydroecological responses of the Athabasca Delta, Canada, to changes in river flow and climate during the 20th century. Ecohydrology, 1(2): 131–148.
Downloads
Published
How to Cite
Issue
Section
License
Copyright (c) 2026 Bryan Ricardo Villanueva-Pérez, Mariela Carolina Loján-Avellan, Gabriela Elizabeth Santana-Baque, Magaly Monserrate-Puente, Mariuxi Fernanda Cevallos-Chevez, Josselin Valeria Saltos-Icaza
This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.
